Metodo C.P.S Directo o en Fresco

"MÉTODO DE COPROPARASITOSCOPICO DIRECTO O EN FRESCO"  

Nombre:  María Fernanda Calva Moreno 

Fecha:  29/08/2013                        Grupo: "3DM"

  

1.- Introducción.

Como sabemos uno de los primeros microscopistas fue Antón Van Leewenhoek y a mediados del siglo XVII fue el primero en utilizar este método al observar directamente en sus propias heces fecales, tofozoitos de Giardia lamblial.

El método que necesita menos equipo y es mas sencillo de realizar, corresponde a las preparaciones húmedas  que se hacen directamente con muestras de heces. Para las preparaciones directas de heces frescas o no preservadas, los exámenes ordinarios se hacen con solución salina isotónica y lugol. Si se emplean emplean heces preservadas, el formol sirve de diluyente.

las preparaciones no teñidas son de especial valor para el estudio de parásitos vivos, como trofozoitos de protozoarios móviles, huevos de helmintos para el estudio de parásitos vivos, como emplea principalmente para la búsqueda e identificación de quistes y larvas, con base a sus características.

La mezcla normal con el tracto intestinal por lo general no asegura una distribución uniforme de trofozoito de protozoarios móviles  huevos de helmintos y larvas de nematodos.sin embargo el examen de materia fecal directo o en fresco puede relevar o no parásitos, dependido de la intensidad de la infección.

2.- Fundamento. 

La solución salina isotónica da las condiciones adecuadas para que la célula se mantenga viva. El medio ideal para todo tipo de parásito que pueda encontrarse en la muestras de heces, en cualquier etapa de su desarrollo, es la solución salina fisiológica, y el lugol en la práctica ha demostrado su eficacia para la tinción e identificación de parásitos intestinales.

3.- Material.

* Muestra fecal

* Aplicadores de madera 

* Portaobjetos de 25 x 74 mm.

* Cubreobjetos

* Solución salina isotónica

* Lugol parasitológico

4.- Técnica 

• En un portaobjetos colocar una gota de solución salina isotónica.
• Con la punta del aplicador tomar una pequeña muestra de aproximadamente de 1 a mg de heces, en muestras con moco y sangre elegir esta parte para estudiar.
• Mezclar, procurando hacer una suspensión de preparación delgada y no un frotis.
• Quitar de la suspensión fibras y otros fragmentos grandes.
• Colocar el cubreobjetos lentamente procurando no dejar burbujas.
• Examinar al microscopio en forma sistemática, a seco débil y a seco fuerte.
• Repetir la operación con una gota de lugol en lugar de la solución salina.

   

Forma de reportar.

Primero se escribe la fase o estadio y enseguida el nombre del parásito  con el genérico iniciando con mayúscula y el especifico con minúscula, subrayado o escribiendo con otro tipo de letra.

Por ejemplo:

Huevos de Áscaris  Lumbricoides

5.- Ventajas y desventajas.

A) Ventajas.

* La sencillez y la rapidez.

* Ambos tipos de montaje se pueden preparar en un mismo portaobjetos.

* Esta técnica es la más útil para encontrar trofozoitos de amibas y flagelados.

* Permite observar la movilidad de los organismos, la cual con mucha frecuencia es característica y sirve para hacer identificación exacta.

B) Desventajas.

* Las preparaciones con lugol, pueden destruir las formas sensibles como los trofozoitos.

* La muestra utilizada es tan pequeña que es poco representativa.

6.- Precauciones.

* Una preparación satisfactoria debe tener densidad ligeramente opaca, pero ser lo bastante delgada que permita leer las letras a través de esta.

* Se debe ser perfectamente los elementos en la preparación, sin que se dificulte la observación por el exceso de burbujas y detritos microscópicos.

* En heces liquidas y semilíquidas hay que seleccionar el moco sanguinolento o los esfacelos delgados del tejido y en heces formadas, hacer raspados para obtener material de la superficie en varias partes de la masa fecal.

* Utilizar intensidad lumínica baja.

* Examinar por lo menos tres muestras antes de considerar negativos los resultados.

* La materia fecal es potencialmente infectante, por lo que se deberá tener los cuidados necesarios para su manejo.

7.- Auto evaluación.

¿Qué es la solución salina isotónica?

R= Es la que da las condiciones adecuadas para que la célula se mantenga viva. 

8.- Conclusión.

Observamos unos quistes, grasas y también tejidos de almidón. Esta practica me pareció muy fácil de hacer pero también muy importante.

Realizar este tipo de técnicas son muy practicas y muy necesarias para descartar cualquier tipo de enfermedad y cosas así. Esta practica me ayudo a reforzar algunos de los conocimientos teóricos que ya conocía.  

9.- Bibliografia visitada por el alumno:
http://azzuliithaderiivera.blogspot.mx/
http://www.uv.mx/personal/sortigoza/files/2011/05/manual_para_gral_2012.pdf